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Detergenzien

Detergenzien - auch als Tenside oder Tenside bezeichnet - sind amphipathische Verbindungen mit sowohl lipophilen (hydrophoben; unpolaren) als auch hydrophilen (polaren) Seiten innerhalb eines Moleküls.

 

Daher sind sie sowohl in wässriger Lösung als auch in unpolaren organischen Lösungsmitteln löslich - und können die Löslichkeit anderer Moleküle (wie Lipide oder hydrophobe Proteine in Pufferlösungen) beeinflussen. Detergenzien werden häufig in der Biochemie, Zellbiologie oder Molekularbiologie eingesetzt. Zelllyse, Proteinauflösung, Proteinkristallisation oder Reduktion der Hintergrundfärbung in Blotting-Experimenten sind nur einige Beispiele.

Detergenzien können beispielsweise nach ihrer chemischen Struktur unter Angabe ihrer polaren und unpolaren Gruppe (Glukoside, Alkyl-Ionen-Detergenzien, Polyoxyethylenalkohole, Gallensalze, Sulfonate usw.), des Ladungscharakters (anionisch, kationisch, zwitterionisch = amphoter; nichtionisch) oder einfach danach klassifiziert werden, ob sie in ihrer Fähigkeit, Proteine zu lösen und / oder zu denaturieren, mild oder stark sind. Wir haben uns entschieden, unsere Detergenzien nach ihren Eigenschaften zu ordnen:

  • anionische Detergenzien
  • kationische Detergenzien
  • zwitterionische Detergenzien
  • nichtionische Detergenzien
  • isomerreine Detergenzien für die Kristallographie

Aber wie wählt man das richtige Detergenz aus?

Es gibt eine große Anzahl verschiedener Detergenzien, und die Wahl des besten Detergens für eine spezielle Anwendung ist nicht leicht. In vielen Fällen muss ein Satz von Detergenzien getestet werden, um dasjenige mit den besten Eigenschaften auszuwählen. Wenn das Ziel die Isolierung eines Proteins ist, das seinen strukturellen und funktionellen Zustand beibehält, sollte man die Temperatur, den pH-Wert und die Ionenstärke des Systems sowie die Wechselwirkung mit den Assays berücksichtigen. Mehrere andere Parameter können die Auswahl ebenfalls beeinflussen. Unter der Annahme, dass die oben genannten Faktoren vom Protein diktiert und konstant gehalten werden, bleiben die Stärke des Detergens (in diesem Fall eine milde, nicht denaturierende), die chemische Struktur, die Löslichkeit und die Konzentration zu optimieren.

Der CMC-Wert ist spezifisch für jedes Detergenz.

Ab einer kritischen Konzentration, dem so genannten CMC-Wert (Critical Micellar Concentration), beginnen Detergenzien stabile Aggregate (Mizellen) zu bilden. Der CMC-Wert ist für jedes Detergens spezifisch und kann durch verschiedene Faktoren (chemische Struktur, pH-Wert, Temperatur, Ionenstärke) beeinflusst werden. In wässrigen Lösungen befindet sich die hydrophile Stelle der Monomere auf der Außenseite der Mizelle und der lipohile Teil im Inneren. In organischen Lösungsmitteln bilden sich umgekehrte Mizellen, wobei die lipophile Stelle außen liegt. Die Mizellengröße nimmt zu und die CMC nimmt mit zunehmender Größe des lipophilen Teils des Waschmittels und, in geringerem Maße, mit abnehmender Größe und Polarität der polaren Gruppen ab. Das bedeutet, dass Detergenzien mit einem höheren hydrophilen Anteil durch eine höhere CMC (Beginn der Bildung von Mizellen in höheren Konzentrationen) und kleinere Mizellen als hochlipophile Detergenzien gekennzeichnet sind. Oberhalb der CMC befinden sich freie Monomermoleküle im Gleichgewicht mit den Mizellen und die Löslichkeit nimmt zu. Detergenzien mit hohen CMC-Werten werden durch die Dialyse leichter entfernt.

 

Übersicht Detergenzien

anionische Detergenzien
Prod. Nr. Beschreibung M [g/mol] CMC (25°C) Kommentar
A1013

1-Pentansulfonsäure Natriumsalz Monohydrat

192.21    
A0979 Natriumcholat 430.57 10 mM Wasserlösliches Gallensalz; Bestandteil verschiedener Lysepuffer (z.B. RIPA). Weitere Anwendungen sind Liposomenpräparate, Isolierung von Membranproteinen oder Lipiden, Affinitätschromatographie und Zellkultur. Natriumcholat sollte nicht für die Ionenpaarung von Austauschchromatographie oder Elektrophorese verwendet werden, und bei der Arbeit mit Enzymen, die für ihre Aktivität zweiwertige Kationen benötigen. Es beeinflusst die Protein-Assays nicht und kann leicht dialysiert werden.
A1531 Natriumdeoxycholat 414.57 2.7 mM (20°C) Siehe A0979
A2572 SDS (Natriumdodecylsulfat) 288.38 8.2 mM Hauptanwendungsgebiet ist die Polyacrylamid-Elektrophorese; SDS bindet fast alle wasserlöslichen Proteine (~1,4 g SDS / g Protein) und ermöglicht eine Proteintrennung nach Größe (ohne Berücksichtigung der nativen Ladung oder tertiären Struktur). Weitere Anwendungen sind Blotting und Zelllyse. Wir bieten SDS in verschiedenen Qualitäten und als Lösung (20- oder 10% SDS, A0676).
kationische Detergentzien
Prod. Nr. Beschreibung M [g/mol] CMC (25°C) Kommentar
A0805 Cetyltrimethylammoniumbromid (CTAB) 364.46 0.92 mM Wird in der Polyacrylamid-Gelelektrophorese für Proteine eingesetzt, die ein ungewöhnliches Migrationsverhalten in der SDS-PAGE aufweisen (z. B. stark geladene Proteine oder Untereinheiten von Membranproteinen).
Eine weitere wichtige Anwendung von CTAB ist die Fällung hochmolekularer DNA, insbesondere aus Pflanzenmaterial. Für diese Anwendung empfehlen wir die Verwendung von CTAB für die Molekularbiologie, A6284
zwitterionische Detergentzien
Prod. Nr. Beschreibung M [g/mol] CMC (25°C) Kommentar
A1099 CHAPS 614.89 6.5 mM Cholat-Derivat; geeignet für Experimente, die funktionelle Proteine in ihrem nativen Zustand erfordern. Keine Beeinträchtigung der Protein-Assays nach Lowry. Leicht durch Dialyse zu entfernen.

nicht-ionische Detergenzien

Prod. No. Description M [g/mol] CMC (25°C) Comment
A1669 Brij® 58 1123.51 0.077 mM Bei der Inkubation von lebenden Zellen mit diesen Detergenzien entsteht das sogenannte Zytoskelett. Je nach Konzentration, Expositionszeit und Zelltyp treten Proteine nach einer Verzögerungsphase aus den Zellen aus. Die Enzymaktivität kann in Gegenwart von Brij® 58 bestimmt werden.
A1905 Digitonin 1229.34   Steroidglykosid von Digitalis purpurea; permeabilisieren Plasmamembranen (diese Fähigkeit kann von Charge zu Charge bei allen Anbietern unterschiedlich sein!) und bilden Komplexe mit Cholesterin. Häufig verwendet, um membrangebundene Proteine aufzulösen. Digitonin ist weder in Wasser, Chloroform noch in Ether löslich. Sie können es in absolutem Ethanol oder DMSO auflösen.
A1386 MEGA-8 321.42 58 mM N-D-Gluco-N-methylalkanamid; chemisches Analoga des Alkylglucosids. Leicht durch Dialyse zu entfernen. Keine Absorption bei 280 nm (im Gegensatz zu NP40 und Triton® X-100). Kompatibel mit der Ionenpaar-Chromatographie und zahlreichen Puffern. Bei der Solubilisierung von Membranen werden die eingebetteten Proteine nicht denaturiert, sondern es werden Protein-Protein-Interaktionen ausgelöst.
Reinheit > 99 %; frei von Alpha-Isomeren.
A1694 Nonidet® P40 (Ersatz)   0.34 mM Suitable for isolation of core proteins and cytoplasmatic proteins from eukaryotic cells (RIPA lysis buffer). Affects the protein-DNA bound; caution in electrophoretic mobility shift assays!
Die Zugabe von NP40 in die Sequenzierungsreaktion von linearer oder "supercoiled" Plasmid-DNA erhöht die Qualität und verhindert eine zusätzliche alkalische Denaturierung. Dieses Produkt ist auch als 10%ige Lösung (peroxidfrei) erhältlich: A2239
A1288 Pluronic® F-68 ˜8350   Copolymere aus Ethylen- (ca. 80 %) und Propylenoxid. Pluronic F-68 wird bei der Kultivierung von Säugetierzellen in großen Chargen eingesetzt. Es verhindert das Anhaften von Luftblasen an Zellen, die sich beim Mischen im Fermenter bilden, den Schaum auf der Oberfläche stabilisieren oder die Widerstandsfähigkeit der Zellmembran gegen hydrodynamische Scherung verbessern.
A4518 Saponin aus Quillaja Rinde     Mischung aus Terpenoidmolekülen und Glykosiden. Permeabilisiert die Zellmembran durch Interaktion mit dem in der Zellmembran vorhandenen Cholesterin. Dadurch bilden sich große Poren, die den Eintritt von konjugierten Antikörpern ermöglichen. Saponin hat sich zum Detergenzien der Wahl für die Färbung von Zytokinen und Phosphoepitopen entwickelt.
A4974 Tween® 20 1227.72 0.059 mM Polysorbat 20; gemeinsame Komponente in Immunoassay-Puffern; beeinflusst die Proteinbestimmung nach Bradford.
Auch in anderen Qualitäten und als 10%ige Lösung (peroxidfrei) erhältlich:
A1284
A1390 Tween® 80 1310 0.01 mM Polysorbat 80
Isomerreine Alkyl-β-D-glucoside zur Isolierung und Kristallisation von Membranproteinen
Prod. Nr. Beschreibung M [g/mol] CMC (25°C) Kommentar
         
A1010 n-Octyl-β-D-glucopyranosid 292.38 25-30 mM Eines der am häufigsten verwendeten Detergenzien in der Membranforschung: Nicht denaturierend (ermöglicht die Isolierung funktioneller Proteine); Hoch wasserlöslich und durch Dialyse leicht entfernbar. Keine Absorption bei 280 nm.
(n=7) Reinheit > 99 %; frei von Alpha-Isomeren.
A1145 n-Octyl-β-D-thioglucopyranosid 308.44 9 mM Alternative zu Octylglucosid. Lösungsstabiler als Octylglucosid; nicht spaltbar durch β-Glucosidasen.
Reinheit > 99 %; frei von Alpha-Isomeren.
Isomerreine Alkyl-β-D-Maltoside zur Isolierung und Kristallisation von Membranproteinen
A6769 n-Decyl-β-D-maltosid 482.57 1.8 mM Reinheit > 99,5 %; frei von Alpha-Isomeren.
(n=9)
A0819 n-Dodecyl-β-D-maltosid 510.63 0.15 -0.19 mM Laurylmaltosid; primär entwickelt zur Isolierung der mitochondrialen Cytochrom-C-Oxidase.
(n=11) Reinheit > 99 %; frei von Alpha-Isomeren.


Trademarks:
Brij (Atlas Chemicals Co.)
Nonidet (Shell)
Triton (Union Varbide Co.)
Pluronic, Tween (ICI America Inc.)

 

Allgemeine Eigenschaften der wichtigsten Detergenzienklassen

Ionische Detergenzien enthalten eine negativ (anionisches Detergenzien) oder positiv (kationisches Detergenzien) geladene hydrophile Hauptgruppe. Der hydrophobe Teil ist entweder eine Alkylkette (wie bei SDS, CTAB oder Alkylsulfonsäuren) oder eine komplexere steroidale Struktur als Gallensäuresalz (wie Cholat und Desoxycholat). Die Letzteren sind in ihrer Struktur steifer und tragen zusätzliche hydrophile Gruppen (Hydroxylgruppen) innerhalb des hydrophoben Steroidgerüsts. So zeigen Gallensalze nur eine polare und eine apolare Fläche, keine klar definierte Polarhauptgruppe.
Die Größe der Mizellen wird durch Abstoßungskräfte zwischen den geladenen polaren Gruppen und hydrophobe Anziehungskraft zwischen den Seitenketten beeinflusst. Dadurch kann die mizellare Größe von ionischen Detergenzien durch die Ionenstärke beeinflusst werden. Die Erhöhung der Konzentration neutralisierender Gegenionen führt zu einer größeren Mizellgröße. Gleichzeitig führt die erhöhte Ionenstärke zu einer geringeren kritischen Mizellbildungskonzentration (CMC) . Eine Änderung der Temperatur hingegen beeinflusst die  kritische Mizellbildungskonzentration (CMC) nur geringfügig. Ionische Reinigungsmittel haben im Allgemeinen höhere CMC-Werte als ihre nichtionischen Analoga. Alkylionische Waschmittel wirken meist denaturierend und trennen Proteinkomplexe in ihre Untereinheiten.

Nichtionische Detergenzien besitzen eine ungeladene, hydrophile Hauptgruppe, die entweder aus Polyoxyethyleneinheiten (z.B. Brij® und Triton®) oder Zuckern (Alkylglucoside oder Maltoside) besteht. Der CMC-Wert und die mizellare Größe dieser Detergenziengruppe wird hauptsächlich von der Temperatur beeinflusst (je höher die Temperatur, desto höher das CMC), nicht von der Ionenstärke.
Nichtionische Detergenzien sind im Allgemeinen nicht denaturierend und daher erste Wahl für Anwendungen, die die Erhaltung der Proteinstruktur und -aktivität erfordern. Es handelt sich um milde Detergenzien, die in erster Linie Lipid-Lipid- und Lipid-Protein-Interaktionen abbrechen, während Protein-Protein-Interaktionen unbeeinflusst bleiben. Insbesondere Alkylglykoside und Maltoside eignen sich zur Isolierung von biologisch aktiven Membranproteinen; Vorteile gegenüber Polyoxyethylen-Detergenzien sind z.B. Homogenität in Zusammensetzung und Struktur (viele Polyoxyethylene bestehen aus mehreren Homologen) und mangelnde Absorption bei 280 nm (Detergenzien, die aromatische Ringe enthalten, absorbieren im ultravioletten Bereich und können die spektrophotometrische Überwachung von Proteinen bei 280 nm stören).

Zwitterionische Detergenzien, wie CHAPS oder Sulfobetain, kombinieren die Eigenschaften von ionischen und nichtionischen Detergenzien. Wie nichtionische Detergenzien haben sie keine Nettoladung. Sie zeigen daher keine elektrophoretische Mobilität und binden nicht an Ionenaustauscherharze. Im Vergleich zu ionischen Detergenzien sind ihre CMC-Werte weniger empfindlich gegenüber Veränderungen der Ionenkonzentration, aber sie haben gemeinsam, dass sie Protein-Protein-Interaktionen effizient abbrechen (denaturierende Wirkung).